鰤鱼诺卡氏菌对乌鳢血液指标的影响  

孙东雨 , 沈理 , 金珊 , 缪燕萍 , 赵青松 , 陈寅儿
宁波大学海洋学院,宁波, 315211
作者    通讯作者
海洋生物学学报, 2012 年, 第 1 卷, 第 6 篇   
收稿日期: 2012年04月10日    接受日期: 2012年04月30日    发表日期: 2001年06月23日
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引用格式(中文):
孙东雨等, 2012, 鰤鱼诺卡氏菌对乌鳢血液指标的影响, 基因组学与应用生物学(online) Vol.1 No.6 (doi: 10.5376/jmb.cn. 2012.01.0006)
引用格式(英文):
Sun et al., 2012,Effect of N. seriolae on Blood Indices of Channa argus , Jiyin Zuxue yu Yingyong Shengwuxue (online) (Genomics and Applied Biology) Vol.1 No. 6(doi: 10.5376/jmb.cn. 2012.01.0006)
 
摘要

应用浓度为106cfu/mL的鰤鱼诺卡氏菌(Nocardia seriolea)菌悬液腹腔注射乌鳢,人工感染诺卡氏菌病。在感染后3 d 、6 d、9 d、12 d 、18 d 、24 d 时抽取乌鳢血液,检测乌鳢的血细胞数、血细胞脆性、溶菌酶、血清总蛋白、碱性磷酸酶、乳酸脱氢酶、尿素氮等指标。结果表明,与对照组相比,感染鰤鱼诺卡氏菌后乌鳢血细胞数呈先升高后降低的趋势,而血细胞脆性在各实验时间点均高于对照组;血清碱性磷酸酶呈先降低后升高趋势,血清溶菌酶、血清总蛋白、血清尿素氮等均呈先降低后增高再降低的趋势,血清乳酸脱氢酶活力显著增加。说明鰤鱼诺卡氏菌感染会引起乌鳢血液指标明显变化。

关键词
鰤鱼诺卡氏菌; 乌鳢; 血液指标

鰤鱼诺卡氏菌(Nocardia seriolae)在分类学上属于细菌域,厚壁菌门,放线菌纲,放线菌目,诺卡氏菌科(Nocardiaceae)。菌体长或短杆状,或细长分枝状,在固体培养基上生长基丝发达,气丝较少,革兰氏染色阳性。

 

致病性鰤鱼诺卡氏菌(N. seriolae)最早于1968年分离自日本养殖五条鰤(Seriola quinqueradiata),它曾是日本鰤鱼养殖中最主要的病原菌之一。近年来,致病性鰤鱼诺卡氏菌对我国台湾及大陆水产养殖业影响也较大,曾引起养殖花鲈(Lateolabrax japonicus)(Chen et al., 2000)、大黄鱼(Pseudosciaena crocea)(Wang et al., 2005)、乌鳢(Ophicephalus argus )(徐益军等,2007)等多种鱼类严重疾病,死亡率高时可达60%以上。

 

诺卡氏菌在水域中含量不高,是一种机会致病菌。当养殖鱼类体质虚弱、免疫力低下时,通过口腔(Isik K et al., 1999)、鳃或创伤(Bransden et al., 2000)而感染。感染诺卡氏菌的病鱼起初体表无明显症状,仅反应迟钝、食欲下降、上浮水面,随着病情加重,部分鱼体表变黑、腹部膨大、鳍条充血,心、脾、肾、肝等内脏器官出现直径1-5 mm的乳白色结节,有些伴有眼球突出、肛门红肿、腹水等现象。由于该病病程长,发病前期无症状或症状不明显,后期治愈率低,发病率和死亡率都较高,迄今尚缺乏相应的防范措施,因此一旦发病损失均极为惨重。

 

关于鱼类诺卡氏菌病的研究资料并不多见,已有的研究主要集中在对病症的描述、流行病学(Chen et al., 2000; 王国良等, 2006; 徐益军等, 2007)、组织病理学(Bransden et al., 2000; 徐益军, 2008)、病原分类学(Chen et al., 2000; Wang et al., 2005; 徐益军, 2008)、药物防治(王家沛等, 2010; 王玉群等, 2010,  科学养鱼, 11:79)等方面。

 

为了更加明确鰤鱼诺卡氏菌的致病机理,本实验采用人工感染的方式研究了鰤鱼诺卡氏菌对乌鳢主要血液指标的影响,以期为鱼类诺卡氏菌病的防治提供依据。

 

1结果和分析

1.1 鰤鱼诺卡氏菌感染后乌鳢血细胞数的变化

乌鳢在感染诺卡氏菌后,血细胞数量呈先升高后降低的变化趋势(图1),感染3 d和18 d时血细胞数与对照组相比差异性显著(P<0.05),其它各实验时间点差异不显著(P>0.05)。

 

1.2 鰤鱼诺卡氏菌感染后乌鳢血细胞脆性的变化

乌鳢在感染诺卡氏菌后其血细胞脆性呈增大趋势(图2)。感染3 d、12 d时与对照组相比有显著差异(P<0.05),其它各实验时间点差异不显著(P>0.05)。

 

1.3 鰤鱼诺卡氏菌感染后乌鳢血清溶菌酶活力的变化

感染诺卡氏菌后,乌鳢血清溶菌酶活力呈先降低后逐渐增强再减弱的趋势(图3).感染3 d时实验组溶菌酶活力低于对照组,但差异不显著(P>0.05);感染6-24 d时实验组溶菌酶活力均高于对照组,其中感染9 d,12 d,18 d时实验组溶菌酶活力与对照组存在显著性差异(P<0.05);其它各实验时间点差异不显著(P>0.05)。

 

1.4 鰤鱼诺卡氏菌感染后乌鳢血清总蛋白的变化

感染诺卡氏菌后,乌鳢血清总蛋白的变化呈先降低后逐渐增强再降低的趋势(图4)。感染3 d时实验组血清总蛋白低于对照组,但差异不显著(P>0.05);感染6 d、9 d、12 d时实验组血清总蛋白呈增长趋势并于12 d时达到最大值,与对照组存在显著性差异(P<0.05),然后其血清总蛋白再逐渐减少。

 

1.5 鰤鱼诺卡氏菌感染后乌鳢血清碱性磷酸酶活力的变化

感染诺卡氏菌后,乌鳢血清碱性磷酸酶活力的变化呈先降低后升高趋势(图5)。感染3 d、6 d、9 d时实验组碱性磷酸酶均低于对照组,但差异不显著(P>0.05);而感染12 d、18 d、24 d时实验组均高于对照组,24 d时与对照组差异显著(P<0.05)。

 

1.6 鰤鱼诺卡氏菌感染后乌鳢血清尿素氮的变化

乌鳢在感染诺卡氏菌后其血清尿素氮含量呈先降低后增高再降低的趋势(图6)。感染9 d时实验组尿素氮达到最大值为0.77±0.02 mmol/L,感染9 d、12 d时与对照组存在显著性差异(P<0.05);其它各实验时间点差异不显著(P>0.05)。

 

1.7 鰤鱼诺卡氏菌感染后乌鳢血清乳酸脱氢酶活力的变化

感染诺卡氏菌后,乌鳢血清乳酸脱氢酶的变化情况呈现感染组乌鳢血清LDH在各实验时间点均显著高于对照组(图8),其中感染9 d、12 d、18 d时实验组较对照组极显著(P<0.01)增加,感染12 d时达到最大值395.0±12.34。

 

2讨论

众多的研究表明,疾病会引起机体代谢稳定态的改变。血液中的某些指标变化与机体组织损害和疾病有着密切的联系,可作为临床诊断的指标。据报道,鱼类的血细胞具有吞噬异物、分泌活性物质、参与机体的伤口修复、防御等生理功能。环境条件或机体生理状态的变化均能造成鱼类血细胞数量和脆性的改变(蒋秉坤,范钦信,1998,人民卫生出版社,pp.104-143)。本实验结果显示,感染诺卡氏菌后,短时间内乌鳢血细胞数显著升高,但随着感染时间的延长血细胞数逐渐下降;而血细胞脆性均显著增大。作者认为受致病菌刺激后,鱼体产生应激反应,使得造血组织和肾、脾脏等贮血器官释放出大量血细胞,因此,感染初期使得血液中的血细胞数量激增,而随着感染的延续,鱼体造血机能受到抑制以及肾、脾等贮血组织遭到破坏,血液中新生红细胞比率减少,血细胞趋于老化,从而导致了鱼类血细胞数量显著下降、血细胞脆性上升,这与鄢庆枇(2007)、张伟妮(2011)等研究结果基本一致,而与Benli(2004)、苏时萍(2007)、 徐晓津(2010)等的研究结果略有差异,原因可能是与病原菌感染的时间有关。

 

血清溶菌酶主要由肝脏合成,是鱼类的主要非特异性免疫物质。马骞等(2010)研究认为致病菌感染可使鱼体血清溶菌酶活力升高,但幅度较小,与正常组无显著性差异。而本实验显示感染诺卡氏菌3d时乌鳢血清溶菌酶活力低于对照组,其后逐渐升高并显著高于对照组,这与孙峰等(2005)、王文博(2002)的研究结果相同,他们认为这可能是由于鱼体在应激的条件下,其溶菌酶活力暂时受到了抑制,其后溶菌酶活力显著升高则可能是鱼体在经历了一段应激状态之后而产生的一种保护机制,借此维持机体的自身平衡来克服外界刺激。

 

血清总蛋白是多种蛋白质的总和,如载体蛋白质、抗体、凝血子等,它们来源于各组织细胞,执行着许多功能,很多疾病可引起它的变化;血清碱性磷酸酶主要来源于肝脏和骨骼,是生物体内的一种重要的代谢调控酶,也是溶酶体酶的重要组成部分,与肝、骨疾病密切相关;乳酸脱氢酶是重用的糖酵解酶,主要分布于肾、心、肝、脾等组织,血清中含量很低;血清尿素氮浓度可以较准确地反映动物体内蛋白质代谢和氨基酸之间的平衡状况,血清中尿素氮浓度的降低,意味着蛋白质分解速度降低,合成速度增大(丁立云, 2010; 乔伟亮等, 2010; 吴莉芳, 2010),因此,以上这些指标均可用来诊断鱼类健康、营养和疾病等状况(蒋秉坤,范钦信,1998,人民卫生出版社,pp.104-143)。本实验结果显示,与对照组相比,感染组乌鳢血清总蛋白、血清尿素氮等含量及血清碱性磷酸酶、血清乳酸脱氢酶等酶活力均发生了显著的变化,说明鰤鱼诺卡氏菌感染已造成乌鳢肝、肾、心、脾等主要组织细胞严重损伤,营养物质代谢、抗病力、排泄等方面的生理功能受到了严重损害。

 

 

3材料与方法

 

3.1 实验菌种及实验用鱼 

鰤鱼诺卡氏菌(N. seriolae)分离自养殖乌鳢体内,由宁波大学海洋学院水产动物病害防控实验室提供;溶壁微球菌(Microcrococcus lysodeikticus)购自南京建成生物工程公司。

 

乌鳢购自宁波水产市场,体重300~400 g,共80尾。养于室内大塑料水簇箱中并用遮阳布适当遮盖。根据水质情况每天及时吸出粪便并用曝气自来水换水1-2次,每次换水1/3,试验期间连续充氧,投喂小杂鱼。

 

3.2 药品和试剂   

0.067mol/ mL磷酸缓冲液PBS (pH 6.4);血清总蛋白(TP)、碱性磷酸酶(ALP)、尿素氮(BUN)、乳酸脱氢酶(LDH)等试剂盒购自美康生物科技有限公司;TSA培养基、普通营养琼脂培养基等购自杭州天和微生物试剂有限公司。

 

3.3 菌悬液的制备  

将溶壁微球菌接种于普通营养琼脂平板上,28℃培养24 h,用0.067 mol/ L PBS (pH 6.4)将菌苔洗脱下来制成0.2 mg/ mL 的菌悬液(在570 nm时吸光值A=0.400) (简纪常等, 2002),备用。将鰤鱼诺卡氏菌接种于TSA斜面上,28℃培养5-7 d后,用0.7%无菌生理盐水将菌苔洗脱下来制成浓度约为106cfu/mL的菌悬液,备用。

 

3.4 人工感染实验  

实验分为感染组和对照组,以腹腔注射的方式使乌鳢感染鰤鱼诺卡氏菌。感染组每尾注射106cfu/mL的菌悬液0.3 mL,对照组每尾鱼注射0.3 mL 0.7%的无菌生理盐水,分别在注射后3 d、6 d 、9 d、12 d、18 d、24 d 时每组各取5尾鱼抽取血液,用以各项血液指标的测定。

 

3.5 乌鳢血细胞和血清的收集  

将乌鳢侧置于解剖盘中,用5mL针筒尾静脉取血加至离心管中4℃静置过夜后,经3 000r/ min 离心10 min后收集血清,用于溶菌酶和其它生化指标的测定;另取肝素钠抗凝血,用于血细胞计数及血细胞脆性的测定。

 

3.6 血细胞计数及血细胞脆性测定 

血细胞计数按Neubuer氏改良方法进行。血细胞脆性测定参照解景田和赵静(2002,高等教育出版社,pp.62)的方法,取10支小试管,用1% NaCl溶液配制出0.15% ~ 0.45%级差为0.02%的16级NaCl系列浓度,用细口吸管吸取新鲜血液,在各浓度试管中各加一滴,轻轻摇匀,静置2h后观察溶血现象。

 

3.7 溶菌酶活力和血液生化指标的测定

溶菌酶活力参考简纪常等(2002)的方法进行测定。血清总蛋白(TP)、碱性磷酸酶(ALP)、尿素氮(BUN)、乳酸脱氢酶(LDH)等生化指标的测定在日立7020全自动生化仪上完成。

 

3.8 数据统计分析

所得结果均以5个平行组数据的平均值 ±标准差(Means±SE)表示;所有数据分析均采用SPSS 13.0 (Statiscal Package for the Social Science) 统计软件进行单因素方差分析(one-factor analysis of variance)和均值多重比较分析 (LSD法)。

 

作者贡献

孙东雨和沈理为同等贡献第一作者,负责本研究的具体实施及论文撰写;缪燕萍参与了实验研究;赵青松和陈寅儿负责实验指导及实验材料购买;金珊为通讯作者,负责实验设计、指导及论文修改。

 

致谢

本研究由浙江省自然科学基金项目(No.Y3100511, Y304078)资助

 

参考文献 

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